Bienvenue à BIO-POLY

Site informatif sur les Bioflavonoïdes et les Polyphénols


For English: www.bio-poly.info


BIOFLAVONOIDES ET POLYPHENOLS

Qu’est-ce que BIO-POLY?


Ce site web est dédié afin de donner de l’information concernant les mélanges de BIOFLAVONOIDES ET POLYPHÉNOLS (BIO-POLY) présent dans les produits de BIOSECUR LAB.



BIOSECUR LAB a sélectionné un mélange de POLYPHENOLS et de BIOFLAVONOIDES dans le but de formuler des antimicrobiens naturels pour utilisation alimentaire, et cela afin d'éliminer les pathogènes et les microorganismes d'altération. Et pour assurer l'innocuité alimentaire.



Vous n'utiliserez plus jamais encore les conservateurs chimiques.


Nos recherches scientifiques peuvent vous aider afin de trouver quel produit sera le plus adéquat à être utilisé dans vos produits alimentaires.

MODE D'ACTION

BIOSECUR LAB possède un mélange de BIOFLAVONOIDES ET POLYPHÉNOLS (BIO-POLY) qui ont été soigneusement sélectionner dans le but d’assurer les propriétés antimicrobiennes de leurs produits.


Selon les analyses chimiques, les produits de BIOSECUR sont riches en BIO-POLY. Prenons comme exemple de ces composés : les flavanones (naringine, neoeriocitrine, neohespéridine et hespéridine), les flavonols (kaempferol, quercetin et rutine) etc.




Les modes d’action des BIO-POLY :


  1. Augmenter la perméabilité de la membrane cellulaire
  2. Endommage la membrane bactérienne
  3. Réduction du Ph bactérien 
  4. Perte des constituants cellulaires
  5. Destruction de l’ADN bactérien
  6. Inhibition de la communication entre les bactéries
  7. Réduction des biofilms jusqu’ à leur élimination
  8. Réduction de la motilité bactérienne
  9. Réduction de la production de l’énergie cellulaire





RECHERCHES SCIENTIFIQUES

Polyphénols


Les polyphénols sont des composés avec un ou plus de groupement phénolique. Selon Petti et Scully (2009) la fonction de ces composés est de protéger les plantes contre les microorganismes pathogènes et aussi les insectes.

Les classes les plus importantes des polyphénols sont les acides phénoliques qui incluent les structures polymériques, comme les tannins hydrolysables, lignanes, stilbènes et les flavonoïdes.

Les flavonoides incluent les flavonols (catechines, monomeres et proanthocyanidines-polymères connuent comme les tannins condensés).

  Havsteen (2002); Dabbah et al. (1970) ont trouvé que les résultats in vitro ont montré que les polyphénols interfèrent avec Candida albicans de différentes façons.

Les bioflavonoïdes et leurs propriétés antimicrobiennes

 Les flavonoids sont des substances phénoliques hydroxylées connues d'être synthétisé par des plantes en réponse à des infections microbiennes et ils ont été trouvé comme des substance antimicrobiennes in vitro contre un large spectre de microorganismes. Marjorie, (1999) a rapporté que leur activité été probablement due à leur capacité à se lier à des protéines extracellulaires et solubles et à se lier à des parois cellulaires bactériennes.  


D'après plusieurs recherches scientifiques les polyphénols et bioflavonoids extraient des agrumes ont permis des activités antimicrobiennes élevées contre les pathgènes d'origine alimentaires comme les Gram négatif ou Gram positif et aussi les levures et moisissures.  


 Les flavonoïdes tels que la quercétine, l'apigénine, le kaempferol, la galangine et la génistéine Ont étaient rapporté pour posséder une activité antibactérienne puissante. (Basile et al., 1999; Friedman, 2007; Ohemeng et al., 1993; Rauha et al., 2000).   


Geoghegan et al. (2010) ont révélé que la quercétine possède des propriétés antimicrobiennes significatives sur les pathogènes parodontaux in vitro. En effet, la concentration inhibitrice minimale était de 1000 et 125 ppm contre Actinobacillus Actinomycetemcomitans et Porphyromonas gingivalis. Selon Cushnie and Lamb (2005), la quercétine présente plusieurs modes d'action tels que l'inhibition de la synthèse des acides nucléiques, l'inhibition du métabolisme énergétique et l'inhibition de la fonction de la membrane cytoplasmique.


Effet Anti-biofilm et effet anti-communication des flavonoïdes


Vikram et al. (2010) ont signalé que:

La naringénine, le kaempferol, la quercétine et l'apigenine interfèrent avec le système de communication cellule-cellule.

La quercétine et le kaempferol ont affecté la croissance de Vibrio harveyi et E. coli O157: H7 à 100 μg / ml et ont induit la formation de de biofilm chez Vibrio harveyi et Escherichia coli O157: H7.

Quercétine, naringénine et sinensetine ont induit une forte inhibition de la formation de biofilm.


Vikram et al. (2010) ont constaté que la naringénine a atténué la virulence de Salmonella Typhimurium et la motilité cellulaire.


Activité antimicrobienne de l'Hesperidine et l'Hesperetin


Selon Iranshahi et al. (2015), les polyphénols jouent un rôle important dans la résistance à divers agents pathogènes microbiens.

L'Hesperidine (Hsd), l'hesperetine (Hst), sont deux flavonoïdes issus d'espèces d'agrumes qui présentent des propriétés antimicrobiennes.

 

À titre d'exemple, Hsd et dix autres flavonoïdes isolés à partir d'espèces d'agrumes ont montré des effets inhibiteurs sur les contaminants fongiques alimentaires, y compris Aspergillus parasiticus, Aspergillus flavus, Fusarium semitectum et Penicillium expansum.


Krolicki et Lamer-Zarawska (1984) ont rapporté que l'activité antifongique de l'hespéridine a été observée à une dose allant de 1 à 10 μg, contre Botrytis cinerea, Trichoderma glaucum et Aspergillus fumigatus.


Dans une étude impliquant l'étude de l'activité anti-Helicobacter pylori (HP), in vitro, de certains flavonoïdes et de leurs métabolites, l'hesperetine et d'autres flavonoïdes ont inhibé la croissance de HP (Bae et al., 1999).


Effet antimicrobien de l'extrait d'hibiscus


L'activité antibactérienne des extraits d'Hibiscus sabdariffa peut être attribuée à l'action des composés phytochimiques qu'il contient (Babayi et al., 2004).


Olaleye (2007) a rapporté que l'extrait aqueux-méthanolique de l'Hibiscus sabdariffa avait des activités antibactériennes contre Staphylococcus aureus, Bacillus stearothemophilus, Micrococcus luteus, mascitations de Serratia, Clostridium sporogenes, Escherichia coli, Klebsiella pneumonae, Bacillus cereus et Pseudomonas fluorescence.


Mounnissamy et al. (2002) ont rapporté que les résultats de l'activité antibactérienne de la gossypetine isolée de l'Hibiscus sabdariffa révèlent que l'activité peut être due à la nature polyphénolique de la gossypétine des flavonoïdes. En outre, selon Walsh et al. (2003), le mécanisme d'action peut être par l'inhibition de divers procédés cellulaires, suivi d'une augmentation de la perméabilité à la membrane plasmatique et enfin d'une fuite d'ions à partir des cellules bactériennes.


Liu et al. (2005) ont rapporté que l'extrait aqueux d'Hibiscus Sabdariffa pourrait inhiber plusieurs bactéries infectieuses nosocomiales telles que la Staphyloccocus aureus résistant à la méthicilline et la Klebsiella pneumonia


D'autre part, l'acide protocatechique, un polyphénol qui contient une sous-structure 3,4-dihydroxy, est un composé qui se produit naturellement dans le calice de la roselle. Plusieurs études in vitro ont indiqué que ce composé peut inhiber la croissance de E. coli et des champignons (Fernandez et al., 1996; Aziz et al., 1998).


Références

A. Vikram, Palmy R. Jesudhasan, G.K. Jayaprakasha, Suresh D. Pillai, Arul Jayaraman, Bhimanagouda S. Patil (2011). Citrus flavonoid represses Salmonella pathogenicity island 1 and motility in S. Typhimurium LT2. International Journal of Food Microbiology; 145:28–36.

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0168160510006264


A. Vikram, G.K. Jayaprakasha, P.R. Jesudhasan, S.D. Pillai and B.S. Patil (2010). Suppression of bacterial cell–cell signalling, biofilm formation and type III secretion system by citrus flavonoids Journal of Applied Microbiology, 109(2):515-27. http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1365-2672.2010.04677.x/full


Aziz NH, Farag SE, Mousa LA (1998). Comparative antibacterial and antifungal effects of some phenolic compounds. Microbios 93:43-54.

http://europepmc.org/abstract/med/9670554


Bae EA, Han MJ, Kim DH. (1999). In vitro anti-Helicobacter activity of some flavonoids and their metabolites, Planta Med 65: 442-443.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10454900


Basile, A., Giordano, S., López-Sáez, J.A., Cobianchi, R.C., (1999). Antibacterial activity of pure flavonoids isolated from mosses. Phytochemistry 52, 1479–1482.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10647220


Cushnie TPT, Lamb AJ. 2005. Antimicrobial effects of Flavonoids. Int J Antimicrob Agents 26: 343–356.

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0924857905002554


Dabbah R, Edwards VM, Moats WA (1970). Antimicrobial action of some citrus fruit oils on

selected food-borne bacteria. Appl Microbiol; 19: 27-31.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC376603/


Fernandez MA, Garcia MD, Saenz MT (1996). Antibacterial activity of the phenolic acids fractions of Scrophularia frutescens and Scrophularia sambucifolia. J. Ethnopharmacol. 26:11-14.

http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/0378874196014195


Friedman, M., (2007) Overview of antibacterial, antitoxin, antiviral, and antifungal activities of tea flavonoids and teas. Mol. Nutr. Food Res. 51, 116–134.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17195249


Geoghegan F., Wong R.W.K. and Rabie A.B.M. (2010). Inhibitory effect of Quercetin on Periodontal Pathogens In Vitro. Phytother. Res. 24: 817–820 

http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/ptr.3014/full


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Mehrdad Iranshahi, Ramin Rezaee, Hamideh Parhiz, Ali Roohbakhsh, Fatemeh Soltani (2015) Protective effects of flavonoids against microbes and toxins: The cases of hesperidin and hesperetin Journal of life sciences, 137:125-132.

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Manach C, Scalbert A, Morand C, Remesy C, Jimenez L.(2004) Polyphenols: food sources and bioavailability. American  Journal of Clinical Nutrition ;79:727–47.

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Ohemeng, K.A., Schwender, C.F., Fu, K.P., Barrett, J.F., (1993). DNA gyrase inhibitory and antibacterial activity of some flavones(1). Bioorg. Med. Chem. Lett. 3, 225–230.

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Krolicki Z, Lamer-Zarawska E. (1984). Investigation of antifungal effect of flavonoids. Part 1. Herb Pol 30: 53-57.

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Rauha, J.-P., Remes, S., Heinonen, M., Hopia, A., Kähkönen, M., Kujala, T., Pihlaja, K., Vuorela, H., Vuorela, P., (2000). Antimicrobial effects of Finnish plant extracts containing flavonoids and other phenolic compounds. Int. J. Food Microbiol. 56, 3–12.

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Scalbert A, Williamson G. (2000). Dietary intake and bioavailability of polyphenols. Journal of Nutrition,130:2073S–85S.

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Petti S, Scully C (2009). Polyphenols, oral health and disease: A review. J Dent; 37: 413-423.

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Walsh SE, Maillard JY, Russel AD, Catrenich CE, Charbonneau AL, Bartolo RG.(2003). Activity and mechanism of action of selected biocidal agents on Gram -positive and -negative bacteria. J Appllied Microbiology ;94:240–247.

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